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  • 產(chǎn)品名稱:Cytiva 17544202 Ficoll-Paque PREMIUM密度梯度離心介質(zhì)
  • 產(chǎn)品貨號:17544202
  • 產(chǎn)品規(guī)格:6x100mL
  • 產(chǎn)品品牌:Cytiva
  • 供應(yīng)商:Cytiva
  • 產(chǎn)品產(chǎn)地: 美國 產(chǎn)品價(jià)格:¥2208
  • 產(chǎn)品說明書:
  • 保存于運(yùn)輸說明:
  • 4~30℃避光保存
  • 詳細(xì)信息:
  • 名稱
    品牌
    貨號
    規(guī)格
    保存
    Ficoll-Paque PREMIUM 密度梯度離心介質(zhì)
    Ficoll-Paque™ PREMIUM density gradient media
    Cytiva
    17544202
    6x100mL
    4~30℃
    避光保存

    一、產(chǎn)品概述
    Ficoll-Paque PREMIUM 是一種無菌、即用型密度梯度離心介質(zhì),基于Ficoll®-甲泛影酸鈉(sodium metrizoate)的無菌溶液,密度精確控制在1.077±0.001 g/mL(20℃)。該產(chǎn)品專為從人外周血、骨髓及其他生物樣本中分離單核細(xì)胞(如淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞)而設(shè)計(jì),通過密度梯度離心法實(shí)現(xiàn)高效、高純度的細(xì)胞分離,廣泛應(yīng)用于免疫學(xué)、細(xì)胞生物學(xué)及分子生物學(xué)研究。


    二、產(chǎn)品特征
    • 根據(jù)ISO 13485認(rèn)證的質(zhì)量管理體系生產(chǎn)
    • 適合體外應(yīng)用
    • 無菌即用試劑
    • 確保內(nèi)毒素水平低(< 0.12 EU/mL)并經(jīng)過測試
     


    三、產(chǎn)品優(yōu)勢
    高分離效率:精確的密度梯度確保單核細(xì)胞與紅細(xì)胞、粒細(xì)胞等雜質(zhì)高效分離,目標(biāo)細(xì)胞回收率高(通常>80%)。
    細(xì)胞活性保護(hù):低滲透壓(285±15 mOsm/kg H?O)及優(yōu)化的pH值(6.8~7.4)設(shè)計(jì),******程度減少離心過程中細(xì)胞損傷,維持細(xì)胞活性與功能完整性。
    無菌即用型:產(chǎn)品經(jīng)0.22μm濾膜無菌過濾,無需預(yù)處理,直接使用,降低實(shí)驗(yàn)誤差與操作時(shí)間。
    批次一致性:嚴(yán)格的生產(chǎn)質(zhì)控確保不同批次間密度、滲透壓等關(guān)鍵參數(shù)高度一致,實(shí)驗(yàn)結(jié)果可重復(fù)性強(qiáng)。
    低內(nèi)毒素水平:內(nèi)毒素含量≤0.12 EU/mL,符合細(xì)胞培養(yǎng)級標(biāo)準(zhǔn),避免對細(xì)胞活化或后續(xù)實(shí)驗(yàn)(如流式分析、細(xì)胞培養(yǎng))產(chǎn)生干擾。


    四、產(chǎn)品規(guī)格(Ficoll-Paque PREMIUM 6x100mL)
     

    密度
    Ficoll-Paque™ PREMIUM ,1.077 ± 0.001 g/mL
    穩(wěn)定性
    Ficoll-Paque PREMIUM產(chǎn)品以無菌溶液形式提供,在 4℃~30℃的溫度下儲(chǔ)存并避光,可保持穩(wěn)定至少3年。溶液中出現(xiàn)黃色或顆粒狀物質(zhì)表示 Ficoll-Paque PREMIUM 產(chǎn)品變質(zhì)
    內(nèi)毒素活性******值
    < 0.12 EU/ml
    無菌
    無菌保證等級(SAL)為10-6的高壓蒸汽滅菌
    應(yīng)用
    經(jīng)過優(yōu)化,可以從人外周血、骨髓和臍帶血中分離單核細(xì)胞。
    特性
    Ficoll-Paque PREMIUM 產(chǎn)品構(gòu)成了一系列無菌、即用型密度梯度離心介質(zhì),其中包含注射用水 (WFI) 中的 Ficoll PM400、泛影酸鈉和乙二胺四乙酸 (EDTA) 二鈉鈣。優(yōu)化了不同產(chǎn)品的密度和滲透壓,可從血液和骨髓中分離出單核細(xì)胞
    有效期
    3 年
    物理狀態(tài)
    液體
    滲透壓
    288~310 mOsm/kg
    pH 范圍
    5.5~7.5
    顏色
    無色至微黃色
    質(zhì)檢報(bào)告
    是 

     

    五、適用范圍
    樣本類型:人外周血、臍帶血、骨髓、脾臟等組織單細(xì)胞懸液。
    分離目標(biāo):外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMCs),包括淋巴細(xì)胞(T細(xì)胞、B細(xì)胞、NK細(xì)胞)、單核細(xì)胞等。
    應(yīng)用場景:細(xì)胞分離純化、細(xì)胞表型分析、細(xì)胞培養(yǎng)、病毒分離、核酸提取、流式細(xì)胞術(shù)、細(xì)胞治療研究等。


    六、儲(chǔ)存條件
    儲(chǔ)存溫度:4~30℃避光保存
    保質(zhì)期:未開封狀態(tài)下,3年(具體以產(chǎn)品標(biāo)簽為準(zhǔn))
    注意事項(xiàng):避免冷凍或劇烈震蕩,開封后建議盡快使用,剩余液體需無菌操作分裝并在2~8℃保存,2周內(nèi)使用完畢。


    七、使用方法(簡要流程)
    樣本預(yù)處理:將抗凝血樣本(如EDTA或肝素抗凝外周血)與等量平衡液(如PBS或生理鹽水)稀釋,充分混勻。
    梯度制備:取15mL離心管,緩慢加入Ficoll-Paque PREMIUM(根據(jù)樣本量,通常每10mL稀釋血樣對應(yīng)3-4mL介質(zhì))。
    樣本疊加:用吸管沿管壁緩慢將稀釋血樣疊加于介質(zhì)液面上,避免破壞密度梯度界面。
    離心分離:水平轉(zhuǎn)子離心,400×g,室溫(18-22℃)離心30-40分鐘(無制動(dòng))。
    細(xì)胞收集:離心后管內(nèi)形成明顯分層,中間云霧狀白膜層即為單核細(xì)胞層,用吸管小心吸取該層細(xì)胞。
    洗滌純化:將收集的細(xì)胞用平衡液洗滌2-3次(200×g離心10分鐘),去除殘留介質(zhì)與血小板,獲得純化的單核細(xì)胞。


    八、詳細(xì)使用方法
    (1)試劑配制
    1.稀釋液與洗滌液
    用于血液稀釋和細(xì)胞洗滌的平衡鹽溶液可按以下說明配制。其他稀釋液和洗滌液如等滲無鈣鎂磷酸鹽緩沖液(例如杜氏PBS)、鹽溶液(例如漢克氏液)或細(xì)胞培養(yǎng)基(例如RPMI 1640)亦可使用。
    2.平衡鹽溶液
    配制平衡鹽溶液時(shí),將一份A母液與九份B母液混合后滅菌。每個(gè)樣本至少需處理20毫升。其他無菌標(biāo)準(zhǔn)鹽溶液亦可使用。
    3.Ficoll-Paque分離液
    使用前需將Ficoll-Paque密度梯度介質(zhì)預(yù)熱至18°C至20°C。對于超過3毫升的樣本,請參閱注意事項(xiàng)。
    (2)樣本制備
    為確保分離的單核細(xì)胞具有高活性,應(yīng)使用新鮮血液。樣本制備需在18°C至20°C環(huán)境下進(jìn)行。
    1.取10毫升離心管,加入2毫升經(jīng)去纖維蛋白或抗凝劑處理的血液,以及等體積的平衡鹽溶液(最終體積為4毫升)。
    2.通過反復(fù)倒置離心管或用移液管反復(fù)抽吸混合,使血液與緩沖液充分混勻。
    (3)單核細(xì)胞分離操作流程
    1.充分顛倒Ficoll-Paque介質(zhì)瓶數(shù)次以確?;靹?br /> 使用注射器抽取Ficoll-Paque介質(zhì)時(shí):折斷聚丙烯瓶蓋,將注射器針頭穿過密封隔膜
    使用移液管抽取Ficoll-Paque介質(zhì)時(shí):移除可折斷的聚丙烯瓶蓋。掀起鋁環(huán)。取下金屬密封片。移除銀色圓環(huán)。取下橡膠塞。采用無菌操作技術(shù),吸取所需體積的Ficoll-Paque介質(zhì)。
    2.向離心管中加入3ml Ficoll-Paque介質(zhì)
    3.將稀釋后的血樣(4ml)小心疊加在Ficoll-Paque介質(zhì)溶液上層
    重要提示:疊加樣品時(shí)切勿混合Ficoll-Paque介質(zhì)溶液與稀釋血樣
    4.在18°C至20°C條件下以400g離心30至40分鐘(應(yīng)關(guān)閉離心機(jī)制動(dòng))
    5.用無菌移液管吸除含血漿和血小板的上層液,注意不要擾動(dòng)界面處的單核細(xì)胞層。含有血漿的上層液可保留備用
    6.使用無菌移液管將單核細(xì)胞層轉(zhuǎn)移至無菌離心管
    (4)洗滌細(xì)胞分離物
    1.估算轉(zhuǎn)移的單核細(xì)胞體積。向離心管中的單核細(xì)胞加入至少3倍體積(約6毫升)的平衡鹽溶液。
    2.通過輕柔地反復(fù)吹打使細(xì)胞懸浮。
    3.在18°C至20°C條件下,以400-500×g離心10~15分鐘。
    注:高速離心可提高單核細(xì)胞回收率。但若需同時(shí)去除血小板,建議采用較低離心速度(60~100×g)。
    4.移除上清液。
    5.將單個(gè)核細(xì)胞重懸于6至8毫升平衡鹽溶液中。
    6.在18°C至20°C條件下,以400至500×g離心力(或60至100×g用于去除血小板)離心10分鐘。
    7.移除上清液。
    8.將細(xì)胞沉淀重懸于適合實(shí)驗(yàn)應(yīng)用的培養(yǎng)基中。
    (5)粒細(xì)胞分離操作流程
    1.按照右側(cè)單核細(xì)胞分離流程(步驟1至6)所述方法,使用Ficoll-Paque密度梯度離心液進(jìn)行密度梯度離心。
    2.用無菌移液管吸棄Ficoll-Paque離心液上層,注意不要擾動(dòng)紅細(xì)胞層上方的粒細(xì)胞白膜層。
    3.用移液管收集薄層粒細(xì)胞白膜層,轉(zhuǎn)移至無菌離心管。
    4.用至少五倍體積的平衡鹽溶液重懸細(xì)胞,400×g離心15分鐘。
    5.使用任意選擇的紅細(xì)胞裂解液處理殘留紅細(xì)胞。
    6.將粒細(xì)胞在18°C至20°C條件下以400-500×g離心10-15分鐘。
    7.棄去上清液。
    8.用6-8ml平衡鹽溶液重懸粒細(xì)胞。
    9.在18°C至20°C條件下以400-500×g離心10分鐘。
    10.棄去上清液。
    11.根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求選用適當(dāng)培養(yǎng)基重懸細(xì)胞沉淀。
    (6)注意事項(xiàng)
    1.抗凝劑:肝素、EDTA、檸檬酸鹽、檸檬酸葡萄糖(ACD)和檸檬酸磷酸鹽葡萄糖(CPD)可用作血樣抗凝劑。脫纖維蛋白血無需抗凝劑。但脫纖維化處理會(huì)導(dǎo)致單核細(xì)胞得率降低,并可能增加紅細(xì)胞污染。該過程還會(huì)造成單核細(xì)胞選擇性流失。
    Bøyum研究發(fā)現(xiàn),使用EDTA替代肝素作為抗凝劑可獲得純度略高的單核細(xì)胞制備物。另有研究指出,在從外周血以外的來源純化單核細(xì)胞時(shí),添加肝素可能導(dǎo)致細(xì)胞懸液凝膠化。檸檬酸鹽穩(wěn)定的血樣可能比其他抗凝劑獲得更高質(zhì)量的RNA和DNA,并產(chǎn)生更高的單核細(xì)胞得率。肝素會(huì)影響T細(xì)胞增殖并與多種蛋白質(zhì)結(jié)合。EDTA適用于DNA檢測,但會(huì)干擾Mg2+濃度并影響細(xì)胞遺傳學(xué)分析。研究還顯示EDTA抗凝血比肝素抗凝血具有更高的RNA得率。
    2.血量:通過使用直徑更大的離心管(同時(shí)保持與標(biāo)準(zhǔn)方法相同的Ficoll-Paque介質(zhì)層高度2.4cm和血樣高度3.0cm),可高效處理更大體積的血樣。增加離心管直徑不會(huì)影響所需分離時(shí)間。
    3.血樣儲(chǔ)存:血樣應(yīng)無凝塊并在采集后盡快處理以確保******結(jié)果。延遲處理會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞活性喪失、回收率降低及粒細(xì)胞/紅細(xì)胞污染增加。研究表明室溫儲(chǔ)存24小時(shí)會(huì)導(dǎo)致淋巴細(xì)胞得率下降、表面標(biāo)志物表達(dá)改變及有絲分裂原刺激反應(yīng)減弱。
    4.死細(xì)胞去除:使用Ficoll-Paque PLUS進(jìn)行細(xì)胞分離時(shí)可去除死細(xì)胞。
    5.密度與溫度:密度梯度分離的溫度受室溫、離心機(jī)溫度、密度梯度介質(zhì)溫度及液體樣本溫度影響。需注意"室溫"存在地域差異(如歐洲通常指20°C,北美則>20°C)。已知Ficoll-Paque產(chǎn)品密度隨溫度升高而降低,例如Ficoll-Paque PREMIUM(1.077 g/ml)在20°C、22°C和25°C時(shí)密度分別為1.0772、1.0767和1.0758。
    6.病理血樣:上述標(biāo)準(zhǔn)方法適用于健康人外周血單核細(xì)胞純化。對于感染或癌癥等病理狀態(tài)供體的樣本可能獲得不同結(jié)果(詳見Ficoll-Paque PLUS和Ficoll-Paque PREMIUM的擴(kuò)展應(yīng)用章節(jié)第15頁)。
    7.血小板去除:若需徹底清除單核細(xì)胞組分中的血小板,可在Ficoll-Paque PLUS上層疊加4%-20%蔗糖梯度進(jìn)行二次離心。該方法可有效去除血小板污染,血小板將滯留于蔗糖梯度頂部而單核細(xì)胞會(huì)沉降至Ficoll-Paque PLUS層頂部。替代方案是在分離前用5-二磷酸腺苷(ADP)誘導(dǎo)血小板聚集去除。
    (7)性能故障排查
    若按照推薦標(biāo)準(zhǔn)流程使用,F(xiàn)icoll-Paque PLUS和Ficoll-Paque PREMIUM應(yīng)能穩(wěn)定分離人外周血單個(gè)核細(xì)胞,結(jié)果如第4頁所示。如前所述,F(xiàn)icoll-Paque PREMIUM 1.073和Ficoll-Paque PREMIUM 1.084會(huì)分離出密度亞群略有差異的單個(gè)核細(xì)胞制劑。但某些實(shí)驗(yàn)參數(shù)的偏差可能導(dǎo)致結(jié)果不佳,本故障排查表旨在幫助快速識(shí)別并修正導(dǎo)致性能下降的問題。

     

    性能偏差
    可能問題來源
    注釋
    紅細(xì)胞增多及淋巴細(xì)胞污染
    A. 溫度過低
    所有Ficoll-Paque產(chǎn)品在低溫下密度更高(參見注釋《密度與溫度》),紅細(xì)胞聚集效果較差,導(dǎo)致粒細(xì)胞和紅細(xì)胞無法進(jìn)入Ficoll-Paque介質(zhì)層。建議將溫度升至18°C至20°C。
    B. 離心速度過慢和/或離心時(shí)間過短
    必須保證足夠的離心時(shí)間和重力以確保非淋巴細(xì)胞的完全沉降。
    單核細(xì)胞得率及存活率低
    溫度過高
    Ficoll-Paque產(chǎn)品在高溫下密度較低,部分淋巴細(xì)胞可能滲入介質(zhì)層,細(xì)胞存活率也可能受影響。建議將溫度降至18°C至20°C。
    單核細(xì)胞得率低但存活率正常
    血液未按1:1比例與平衡鹽溶液稀釋;血細(xì)胞比容異常偏高
    高細(xì)胞密度導(dǎo)致大量淋巴細(xì)胞被紅細(xì)胞團(tuán)捕獲。建議進(jìn)一步稀釋血樣。
    單核細(xì)胞得率低且粒細(xì)胞污染增加
    離心轉(zhuǎn)子振動(dòng)導(dǎo)致梯度介質(zhì)擾動(dòng)
    振動(dòng)可能使單核細(xì)胞層擴(kuò)散并與底層細(xì)胞混合。需檢查轉(zhuǎn)子平衡狀態(tài),選擇轉(zhuǎn)速時(shí)應(yīng)避開固有共振頻率。
    單核細(xì)胞得率低、存活率低及其他細(xì)胞污染
    樣本含有密度異常的細(xì)胞(與正常人血細(xì)胞密度不同)
    常見于病理血樣、非人源血樣、陳舊血樣或非外周血來源樣本。此類分離建議選用密度梯度離心介質(zhì)Percoll™ PLUS替代Ficoll-Paque產(chǎn)品。

     

    九、包裝與運(yùn)輸
    包裝:6瓶×100mL/盒,棕色玻璃瓶包裝,避光保護(hù)。
    運(yùn)輸條件:2~8℃冷鏈運(yùn)輸,避免極端溫度。


    十、參考文獻(xiàn)
    1. Richman, S. et al. Factors affecting the turnaround time for manufacturing, testing, and release of cellular therapy products prepared at multiple sites in support of multicenter cardiovascular regenerative medicine protocols–a Cardiovascular Cell Therapy Research Network (CCTRN) study. Transfusion52, 2225–2233 (2012).
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    3. Bøyum, A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood. Isolation of mononuclear cells by one centrifugation, and of granulocytes by combining centrifugation and sedimentation at 1 g. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 21, 77–89 (1968).
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    5. United States Pharmacopeia. Biological reactivity tests, in vitro, chapter <87>.
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